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CRISPR/Cas9基因敲入試驗步驟(三)donor載體構建載體構建

1、質(zhì)粒骨架的選擇
CRISPR/Cas9質(zhì)粒按編輯細胞類(lèi)型可分為八種,Mammalian 、Bacteria 、Drosophila 、Plant、C. elegans 、Yeast 、Zebrafish 、Xenopus,根據質(zhì)粒所攜帶的編輯基因的不同,可分為野生型的cas9、突變型的cas9、cpf1、C2c2(可剪切RNA)。當然,還有一些篩選標記,如puro、GFP、RFP、mcherry、潮霉素等等,我們可以根據自己的需求選擇自己合適的質(zhì)粒。這里故意還掉了一種,最具有爭議的Ngago,本樓主也重復過(guò)這個(gè)試驗,也和大多數重復的人一樣,GFP驗證試驗時(shí),看到熒光顯著(zhù)減弱(本人還特意構建了一種Ngago載體,效果比韓老師的效果好很多),但是當時(shí)沒(méi)有驗證這個(gè)減弱是切割還是敲低,非常遺憾自己想法太簡(jiǎn)單,以先入為主認為是切割而沒(méi)有去驗證;最終結果是劉東老師使用Ngago發(fā)現了有表型(斑馬魚(yú)的眼睛上有缺陷),這個(gè)就是很強的提示,需要去做下一步,盡管基因組上沒(méi)有被切割,有表型,那勢必會(huì )去看該基因表達的數據,最后才有這篇文章。劉東老師運氣也很好,knock down 有表型,如果沒(méi)表型,估計也會(huì )放棄。這里就說(shuō)到這,有不懂的可以留言詢(xún)問(wèn)。。具體分類(lèi)在addgene上有,網(wǎng)址http://www.addgene.org/crispr/。
2、酶切位點(diǎn)的選擇
插入sgRNA的酶切位點(diǎn),質(zhì)?;緸檫@兩種,BsmbI和Bbsi,具體可以參見(jiàn)該質(zhì)粒的protocol,后續的連接、轉化、驗證protocol里面有,我就不啰嗦了。哦還忘了一件事,使用snapgene這個(gè)軟件可以很好地看質(zhì)粒圖譜,非常方便,強烈推薦??!
以慢病毒載體V2為例具體說(shuō)明
3、同源臂的設計
同源臂我們一般都是在切割位點(diǎn)的兩端各選一段,長(cháng)度大約1kb-2kb,效率還可以。當然了,有人也用40-100bp做了也做成功了,但基本原則是越長(cháng)效率越高。1kb-2kb效率已經(jīng)很高,所以這個(gè)最合適。有相關(guān)文獻支持,自己Pubmed查看。
4、啟動(dòng)子、目的基因及其終止子的擴增
這里也沒(méi)什么可說(shuō)的,啟動(dòng)子在我們選擇質(zhì)粒的時(shí)候就決定了,當然我們還可以改造以提高sgRNA的表達效率,這個(gè)時(shí)候我們可以通過(guò)方法篩選出該物種的啟動(dòng)子,替換上去就ok了。
目的基因的話(huà),如果我們要做敲除,基本就是根據基因組,在外顯子區域設計sgRNA序列,切割后以非同源性末端接合(Non-homologous end joining, NHEJ),造成變異而使該基因失去功能。當然還有一種修復方式,同源性重組(Homologous recombination,HR)同源性重組修復是利用細胞內的染色體兩兩對應的特性,若其中一條染色體上的DNA發(fā)生雙股斷裂,則另一條染色體上對應的DNA序列即可當作修復的模版來(lái)回復斷裂前的序列,因此在某些條件下,同源性重組又稱(chēng)作基因轉換(gene conversion)。該方法是用于敲入基因,這個(gè)同時(shí),我們可以加入抑制NHEJ修復的酶,同時(shí)就會(huì )促進(jìn)HR修復,提高重組插入效率。
終止子的話(huà),沒(méi)什么特別,基本可以通用,SV40終止子、BGH終止子等。
5、donor載體的連接及克隆測序
donor載體的連接及克隆測序這個(gè)就是我們分子生物學(xué)學(xué)生的基本功了,就不敘述了。
6、細胞轉染及載體功能的驗證
細胞轉染的話(huà),參見(jiàn)說(shuō)明書(shū)就好了,轉染試劑有lipo2000(適合siRNA和DNA共轉染)、lipo3000(適合DNA)、以及羅氏、qiagen的等。當然還有國產(chǎn)的一些轉染試劑,實(shí)驗室窮點(diǎn)就可以買(mǎi)下,效果還可以,漢恒生物的,比較便宜。

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