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Rt -PCR實(shí)驗操作步驟

RT-PCR實(shí)驗操作步驟 (轉)

默認分類(lèi) 2007-12-25 17:51:05 閱讀233 評論1   字號: 訂閱

一.所用試劑

 1.0.01MPBS緩沖液,PH7.4 :高壓滅菌,40C保存。臨用前-200C放置30分鐘,確保冰冷。

 2.焦碳酸二乙酯(DEPC):sigma公司,40C保存。

 3.0.1%DEPC處理的滅菌去離子水:100ml去離子水中加入0.1mlDEPC,劇烈振蕩混勻,讓DEPC充分進(jìn)入溶液中,370C放置過(guò)夜,高壓蒸汽滅菌30分鐘除去DEPC。40C保存。

 4.單相細胞裂解試劑TRizoL:Invitrogen生命技術(shù)公司,40C保存。臨用前-200C放置30分鐘,確保冰冷。

 5.氯仿:用新開(kāi)封的,10ml分裝,40C保存。臨用前-200C放置30分鐘,確保冰冷。

 6.異丙醇:用新開(kāi)封的,20ml分裝,40C保存。臨用前-200C放置30分鐘,確保冰冷。

 7.0.1%DEPC處理的75%乙醇:無(wú)水乙醇75ml加0.1%DEPC處理的滅菌去離子水至100ml,4C保存。臨用前-200C放置30分鐘,確保冰冷。

 8.cDNA反轉錄試劑盒:MBI公司,-200C保存。

 9.2xPCR試劑:MBI公司,-200C保存。

 10.5xTBE RNA電泳緩沖液:因為T(mén)ris堿可與DEPC發(fā)生反應并使之失活,所以含Tris堿的電泳緩沖液可用DEPC處理的滅菌去離子水配制,0.22um濾器過(guò)濾除菌。室溫保存,臨用前用DEPC處理的滅菌去離子水10倍稀釋。使用本室RNA專(zhuān)用電泳槽,每次需配制0.5x電泳緩沖液500ml。

 11.50xTAE DNA電泳緩沖液:室溫保存,臨用前用去離子水50倍稀釋。使用本室DNA專(zhuān)用電泳槽,每次需配制1x電泳緩沖液1000ml。

 12.6x上樣緩沖液:1.5mlDEPC處理的滅菌離心管中稱(chēng)取2.5mg溴酚藍,加入0.3ml甘油,DEPC處理的滅菌去離子水定容至1ml,40C保存。

 13.1.5%瓊脂糖:RNA電泳,1.5g瓊脂糖加入0.5xTBE RNA電泳緩沖液中;DNA電泳, 1.5g瓊脂糖加入1xTAE DNA電泳緩沖液中。微波爐煮沸熔化后,冷卻至600C左右,每100ml膠加入溴化乙啶(EB,10mg/ml)5ul。

 14.溴化乙錠(10mg/ml):在100ml水中加入1g溴化乙錠,磁力攪拌數小時(shí)以確保其完全溶解,然后用鋁箔包裹容器或轉移至棕色瓶中,保存于室溫。

 15.人淋巴細胞分離液:上海華精生化試劑廠(chǎng)。

二.總RNA提取

[注]1.本方法采用Chomczynski一步法,用單相細胞裂解試劑TRizoL破碎細胞和滅活細胞中內源性RNA酶同步進(jìn)行,可同時(shí)分離RNA、DNA和蛋白質(zhì)。TRizoL中含有酚、強變性劑硫氰酸狐和溶解劑等。本法所提取的RNA可用于RT-PCR、Northern印跡雜交等。

    2.最好單獨存放用于RNA實(shí)驗的試劑,以防止污染。

    3.耐高溫的勻漿器、研缽及研棒用錫箔紙包好,2000C干烤5小時(shí),滅活外源性RNA酶。

    4.離心管、槍頭等塑料制品用0.1%焦碳酸二乙酯(DEPC)水溶液浸泡12小時(shí)以上滅活外源性RNA酶。再用去離子水浸泡10分鐘x3次,以去除DEPC,然后70-800C烤干,高壓蒸汽滅菌30分鐘除去殘留的DEPC,以防DEPC通過(guò)羧甲基化作用對RNA的嘌呤堿基進(jìn)行修飾。

    5.提取RNA所用的去離子水及配制試劑均要經(jīng)含0.1%DEPC處理。   

    6.如果是從完整包裝中新取出的塑料制品,一般無(wú)外源性RNA酶污染,可以直接使用。

    7.實(shí)驗者的雙手是外源性RNA酶的重要污染源,因此務(wù)必戴手套進(jìn)行操作。

    8.DEPC為可疑致癌物,且有芳香性揮發(fā)氣味,使用時(shí)應戴手套、口罩,并打開(kāi)排氣扇。

    9.RNA紫外分光光度計定量所用石英比色皿使用后,在1:1鹽酸甲醇中浸泡30分鐘以上,再用0.1%DEPC處理去離子水沖洗干凈,涼干。

    10.用于RNA電泳的電泳槽用去污劑清洗干凈,自來(lái)水沖洗數次,再用去離子水沖洗1次,無(wú)水乙醇擦洗,干燥。然后灌滿(mǎn)3%的雙氧水室溫放置10分鐘,最后用DEPC處理的去離子水沖洗3次。

    11.提取的RNA經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳后,28S rRNA和18S rRNA應當能清楚地在紫外分析儀下看到,也應當能看到一條由tRNA, 5.8S rRNA和5S rRNA組成的,較模糊遷移較快的帶。如果RNA沒(méi)有被降解,28S rRNA的亮度應當是18S rRNA亮度的兩倍,且這兩條帶都沒(méi)有彌散現象。加樣孔附近有條帶表明產(chǎn)物中混有DNA。

(一).培養細胞中RNA提取

 1.貼壁生長(cháng)的細胞:倒出培養液,加5ml無(wú)菌冰冷的PBS緩沖液沖洗細胞2次。倒出PBS緩沖液(盡量空干),加入1mlTRizoL,用力振蕩培養瓶或培養皿(貼壁較牢固的細胞可用細胞刮刀刮取細胞),使細胞完全脫落,用加樣器吹打均勻,吸入1.5ml離心管中,漩渦混勻器振蕩30秒,室溫靜置5分鐘,使核蛋白完全從核酸上解離。懸浮生長(cháng)的細胞:細胞懸液倒入10-15ml離心管,2000轉/分離心10分鐘收集細胞,倒出培養液,加2ml無(wú)菌冰冷的PBS緩沖液,混勻使細胞沉淀重懸洗滌細胞2次。再2000轉/分離心10分鐘收集細胞,倒出PBS緩沖液(盡量空干),加入1mlTRizoL,用加樣器吹打均勻,吸入1.5ml離心管中,漩渦混勻器振蕩30秒,室溫靜置5分鐘,使核蛋白完全從核酸上解離。

 2.加氯仿200ul,漩渦混勻器振蕩30秒,冰盒上靜置10分鐘,

 3.高速冷凍離心機(溫度設定40C)12000/分離心15分鐘,使混合物分為兩相(RNA留在水相,DNA和蛋白質(zhì)被抽提進(jìn)氯仿層),吸取上層水相0.5ml移至一個(gè)新的1.5ml離心管中,加異丙醇0.5ml。充分混勻,冰盒上靜置10分鐘,使RNA充分沉淀。

 4.高速冷凍離心機(溫度設定40C)12000/分離心15分鐘,棄去上清液,加入冰冷75%乙醇1ml洗滌RNA沉淀,漩渦混勻器振蕩30秒.

 5.高速冷凍離心機(溫度設定40C)8000/分離心5分鐘,棄去上清液,沉淀快速風(fēng)干。但不要完全干燥這一點(diǎn)非常重要,否則RNA沉淀溶解度會(huì )大大降低??赏ㄟ^(guò)在55-600C加熱并用槍頭反復吹打溶液增加RNA的溶解度。

 6.提取的RNA加適量DEPC處理去離子水溶解(組織及培養細胞所提RNA加水50-100ul外周血白細胞所提RNA加水10-15ul)。取5ul+1ul6x電泳上樣緩沖液點(diǎn)樣,電壓120-130V電泳30分鐘左右,如在紫外分析儀下可見(jiàn)5S、18S及28S三條帶出現,說(shuō)明已提出RNA。5S條帶較模糊遷移較快。如果RNA沒(méi)有被降解,28S rRNA的亮度應當是18S rRNA亮度的兩倍,且這兩條帶都沒(méi)有彌散現象。加樣孔附近有條帶表明產(chǎn)物中混有DNA。RNA純度鑒定及定量可用紫外分光光度計,取2ul+148ul去離子水測A260nm/280nm,比值應在1.8-2.0之間。RNA濃度(ug/ml)=A260x稀釋倍數x40。對大多數細胞株來(lái)說(shuō),一個(gè)100ml培養瓶中培養細胞的RNA收率為100-200ug。

7.如暫時(shí)不做反轉錄,,立即放-800C冰箱凍存。

 


貼壁細胞總RNA提取操作流程
 I

細胞長(cháng)滿(mǎn)80%瓶底或皿底,換培養液,第二天提取RNA

 (倒掉培養液,5-10ml冰PBS洗滌細胞2次空干)

加1ml冰TRizoL,用力振蕩培養瓶使細胞完全脫落,加樣器吹打

(吸入1.5ml離心管,旋渦振蕩10秒,室溫靜置5分鐘)
 
加氯仿200ul,漩渦混勻器振蕩10秒,冰盒上靜置10分鐘
 
(40C,8000rpm,5分鐘,)

吸取上層水相0.5-0.7ml移至另一1.5ml離心管中,加異丙醇0.5-0.7ml
 
(充分混勻,冰盒上靜置10分鐘,40C,12000rpm,15分)

棄上清,加75%冰乙醇1ml, 顛倒混勻數次

(40C,12000rpm,15分)

棄上清,沉淀快速風(fēng)干。但不要完全干燥, 加DEPC處理去離子水50-100ul

 

 取5ul作RNA電泳,5ul作RNA定量,余-800C冰箱保存



(二).組織中RNA提取

 1.組織收集:新鮮組織立即放入液氮中30分鐘以上后,可在-800C冰箱保存,數月內不會(huì )影響RNA的產(chǎn)量及質(zhì)量。

 2.取組織50-100mg放入1ml玻璃勻漿器中,加入1mlTRizoL,在冰浴中研磨,懸液轉入1.5ml離心管中,室溫靜置5分鐘,使核蛋白完全從核酸上解離。高速冷凍離心機(溫度設定40C)12000/分離心5分鐘,上清液倒入另一1.5ml離心管中。

 3.以下步驟同培養中細胞RNA提取法(2-7)。

 (三)外周血白細胞RNA提取

 1.抽取靜脈血5ml,注入0.5ml 3.8%枸櫞酸鈉(血液:抗凝劑=10:1)的抗凝管中,加蓋顛倒混勻2-3次。

 2.將上述抗凝血倒入15ml離心管中,加5mlPH7.4的磷酸鹽緩沖液(PBS)等量稀釋。

 3吸取5ml淋巴細胞分離液(上海華精生物技術(shù)公司生產(chǎn))加入另一15ml離心管中。

 4.將稀釋后的抗凝血10ml沿管壁緩慢加到淋巴細胞分離液上,水平離心機2000轉/分離心20分鐘。

 5.吸取中間白細胞層至另一15ml離心管中,加入5mlPH7.4PBS緩沖液混勻(洗滌白細胞),4000轉/分離心5分鐘。棄去上清液,所得白色沉淀即為單個(gè)核細胞,如暫時(shí)不提取RNA,立即-800C冰箱凍存。

 6.加入TRizoL(Invitrogen生命技術(shù)公司生產(chǎn))1ml,用加樣器吹打均勻,吸入1.5ml離心管中,漩渦混勻器振蕩30秒,室溫靜置5分鐘,使核蛋白完全從核酸上解離。

7.以下步驟同培養中細胞RNA提取法(2-7)。

三.反轉錄

參見(jiàn)不同廠(chǎng)家試劑盒說(shuō)明書(shū),以本室使用的Fermentas MBI公司(#K1621)cDNA反轉錄兩步法試劑盒為例。一步法是將反轉錄及PCR反應的所有試劑加在一個(gè)反應體系(EP管),缺點(diǎn)是試劑用量大,反應條件不好掌握;兩步法是先反轉錄,然后進(jìn)行PCR反應。

反轉錄反應

(1)在超凈臺中,取DEPC處理的200μlPCR管置冰上,依次加入

       總RNA                        1μg(2ul)

       隨即引物(0.5μg/μl)         1μl

       無(wú)RNA酶水                   9ul至總體積12μl

       混勻,用微量離心機離心3000轉/分30秒。

(2)置PCR儀上70℃5分鐘變性,取出置冰上冷卻。

(3)PCR管置冰上,依次加入

       5×RT Buffer                       4μl

       RNase inhibitor(20U/μl)           1μl

       10mM dNTP Mix                     2μl

       混勻,用微量離心機離心3000轉/分30秒。

(4)置PCR儀上25℃5分鐘。取出置冰上冷卻。

(5)加入M-MuLV逆轉錄酶(200U/μl)1μl至終體積20μl。

(6)置PCR儀上按以下條件進(jìn)行

       25℃                               10分鐘

       42℃                               60分鐘

       70℃                               10分鐘

    立即冰上冷卻,產(chǎn)物cDNA即用于PCR或置-20℃冰箱保存。

四.PCR反應

(1)取200μIPCR管依次加入

       2×PCR Master Mix                    12.5μl

       cDNA                                2.0μl

       上游引物                            1μl

       下游引物                            1μl

       滅菌去離子水                        8.5ul至25μl

用微量離心機離心3000轉/分30秒混勻。

(2)按以下條件進(jìn)行PCR反應:

        94℃        5分鐘             預變性

        94℃        30秒              變性

        55-60℃     45秒              退火

        72℃        45秒              延伸,共30-35個(gè)循環(huán)

72℃        7分鐘             最終延伸。

五.實(shí)驗對照

1.陽(yáng)性對照:采用已知高表達細胞的總RNA進(jìn)行逆轉錄和PCR擴增。

2.陰性對照:用滅菌去離子水代替總RNA的反應體系進(jìn)行逆轉錄和PCR擴增。

3.內參照:以引物進(jìn)行PCR反應的同時(shí),以β-actin引物(或者GAPDH引物)進(jìn)行PCR反應。

六.瓊脂糖凝膠電泳

   取內參照擴增產(chǎn)物及PCR產(chǎn)物15ul+3ul 6x上樣緩沖液,同時(shí)用相應的5-8ul DNA Marker,2%瓊脂糖凝膠電泳,電壓110-120V,30-45分鐘。

七.紫外分析儀觀(guān)察、數碼照相

于紫外透視儀下觀(guān)察有無(wú)特異性擴增帶,并照相記錄。

β-actin擴增產(chǎn)物大小540bp,340 bp。

   GAPDH擴增產(chǎn)物大小142bp。

 

1、載玻片的處理:

抗原修復過(guò)程中,由于高溫、高壓、輻射等諸多因素的影響,極易造成脫片。為保證試驗的正常進(jìn)行,可選用我公司提供的ZLI-9001 APES、ZLI-9003 HistogripTM或ZLI-9005 Poly-L-Lysine等幾種試劑,對已清洗的載玻片進(jìn)行處理。具體方法如下:

1.1 APES:現用現配。將洗凈的玻片放入以1:50比例丙酮稀釋的APES中,停留20~30秒鐘,取出稍停片刻,再入純丙酮溶液或蒸餾水中涮去未結合的APES,置通風(fēng)櫥中晾干即可。用此載玻片撈片時(shí)應注意組織要一步到位,并盡量減少氣泡的存在,以免影響染色結果。

1.2 HistogripTM:將洗凈的玻片放入以1:50比例丙酮稀釋的Histogrip液中,停留1~2分鐘,然后用雙蒸水快速清洗三次,室溫干燥或60oC烤箱烘烤一小時(shí),裝盒備用。

1.3 Poly-L-Lysine:將洗凈、干燥的載玻片放入以1:10比例去離子水稀釋的多聚賴(lài)氨酸溶液中,浸泡5分鐘,60oC烤箱烘烤一小時(shí)或室溫過(guò)夜干燥。裝盒備用。試驗中使用的器具均為非玻璃制品。

2、常用酶消化:

2.1 胰蛋白酶:一般使用濃度為0.05%~0.1%,消化時(shí)間為37℃、10~40分鐘,主要用于細胞內抗原的顯示。

2.2 胃蛋白酶:一般使用濃度為0.4%,消化時(shí)間為37℃、30~180分鐘,主要用于細胞間質(zhì)抗原的顯示,如:Laminin(層粘蛋白),Collagen IV(IV型膠原)等。

2.3 g/ml的saponin溶液,消化時(shí)間為室溫孵育30分鐘。?皂素(Saponin):一般使用濃度為2~10

3、抗原熱修復:

可根據實(shí)驗室的具體條件,選用微波爐抗原修復、高壓鍋抗原修復或水浴高溫抗原修復??乖瓱嵝迯涂蛇x用各種緩沖液,如TBS、PBS、重金屬鹽溶液等,但實(shí)驗證明,以0.01M枸櫞酸鹽緩沖液(pH6.0)效果最好。請選用我公司提供的ZLI-9064 ?枸櫞酸鹽緩沖液(粉劑)配制,取該粉劑一包溶于1000ml的蒸餾水中,混勻,其pH值在6.0 0.1,如因蒸餾水本身造成的pH值偏差,請自行調整。

3.1 石蠟切片微波爐抗原修復操作方法:切片脫蠟至水后,3%H2O2處理10分鐘,蒸餾水洗2分鐘×3。將切片放入盛有枸櫞酸鹽緩沖液(工作液)的容器中,置微波爐內加熱使容器內液體溫度保持在92℃~98℃之間并持續10~15分鐘(注意:無(wú)論是使用醫用或家用微波爐,請根據具體機型酌情設置條件,務(wù)必滿(mǎn)足以上步驟中對溫度和時(shí)間的要求)。取出容器,室溫冷卻10~20分鐘(注意:不可將切片從緩沖液中取出冷卻,以便使蛋白能夠恢復原有的空間構型)。PBS洗,下接免疫組化染色步驟。

3.2 石蠟切片高壓抗原修復操作方法:切片脫蠟至水。將1500ml~3000ml的枸櫞酸鹽緩沖液(工作液)注入不銹鋼壓力鍋中加熱至沸騰。切片置于金屬架上,放入鍋內,使切片位于液面以下,蓋鍋壓閥。當壓力鍋開(kāi)始慢慢噴氣時(shí)(約加熱5~6分鐘后),計時(shí)1~2分鐘,然后將壓力鍋端離熱源,冷水沖至室溫后,取下氣閥,打開(kāi)鍋蓋,取出切片,蒸餾水洗后,PBS洗2分鐘×3,下接免疫組化染色步驟。

3.3 石蠟切片電爐煮沸抗原修復操作方法:切片脫蠟至水后,放入盛有枸櫞酸鹽緩沖液(工作液)的容器中,并將此容器置于盛有一定數量自來(lái)水的大器皿中,電爐上加熱煮沸,從小容器的溫度到達92℃~98℃起開(kāi)始計時(shí)15~20分鐘,然后端離電爐,室溫冷卻20~30分鐘,蒸餾水沖洗,PBS洗,下接免疫組化染色步驟。

4、免疫組化染色步驟:

(以美國ZYMED公司SP試劑盒為例)

石蠟切片脫蠟至水。

3%H2O2室溫孵育5~10分鐘,以消除內源性過(guò)氧化物酶的活性。

蒸餾水沖洗,PBS浸泡5分鐘,(如需采用抗原修復,可在此步后進(jìn)行)。

5~10%正常山羊血清(PBS稀釋?zhuān)┓忾],室溫孵育10分鐘。傾去血清,勿洗,滴加適當比例稀釋的一抗或一抗工作液,37℃孵育1~2小時(shí)或4℃過(guò)夜(兩次溫箱1小時(shí),效果都很差。這次用4度過(guò)夜看看)。

PBS沖洗,5分鐘×3次。

滴加適當比例稀釋的生物素標記二抗(1%BSA-PBS稀釋?zhuān)?7℃孵育10~30分鐘;或滴加第二代生物素標記二抗工作液,37℃或室溫孵育10~30分鐘。

PBS沖洗,5分鐘×3次。

滴加適當比例稀釋的辣根酶標記鏈霉卵白素(PBS稀釋?zhuān)?7℃孵育10~30分鐘;或第二代辣根酶標記鏈霉卵白素工作液,37℃或室溫孵育10~30分鐘。

PBS沖洗,5分鐘×3次。

顯色劑顯色(DAB或AEC)。

自來(lái)水充分沖洗,復染,封片。

冰凍切片免疫組化染色步驟

m,室溫放置30分鐘后,入4℃丙酮固定10分鐘,PBS洗,5分鐘×3。用3%過(guò)氧化氫孵育5~10分鐘,消除內源性過(guò)氧化物酶的活性。PBS洗,5分鐘×2。?冰凍切片4~8

下接免疫組化染色操作步驟。

一.所需儀器設備

1.電泳儀

2.垂直電泳槽

3.轉移電泳槽:濕轉或半干轉電泳槽

4.硝酸纖維素膜(NC膜)

5.暗盒

6.5x7cm X膠片

[注:電泳槽、玻璃板、梳子及膠條的清洗:自來(lái)水沖洗數次――去離子水沖洗數次2次――37C烤干備用。]

二.所用試劑

[注:配制及稀釋試劑均用去離子水,實(shí)驗器皿自來(lái)水清洗完畢再用去離子水沖洗]

1.Lysis buffer:RIPA 三去污劑裂解緩沖液

 50mM Tris.Hcl                                  3.03g

  150mM NaCl  生理鹽水                           4.35g

  0.02%NaN3(防腐劑,可以不加)                  0.1g

  0.1%SDS  強陰離子去污劑                        0.5g

  1% NP-40 去污劑                                5ml

  0.5% Sodium deoxycholate 去氧膽酸鈉  去污劑    2.5g

配制500ml,10M鹽酸調PH8.0, 4度保存。

使用前按1:50加入100mM PMSF(苯甲基磺酰氟,平時(shí)放-20度)和protease inhibitor(先溶在2ML水中,分裝在小管中,保存在-20度),配好后馬上使用。也可分裝成(RIPA300ul+6ul100mM PMSF+6ulprotease inhibitor)(培養細胞及微小組織蛋白提取)若干管,-20度保存;分裝成(RIPA1000ul+20ul100mM PMSF+20ulprotease inhibitor)(較大組織蛋白提取)若干管,-20度保存。

[注:也可使用單去污劑裂解緩沖液,將1% NP-40換為1%Triton X-100。去掉0.1%SDS及0.5% Sodium deoxycholate 去氧膽酸鈉]

PMSF儲存液 100mM(17.4mg/ml),溶于異丙醇。有效濃度100ug/ml。

2.150mM Nacl(0.87%Nacl,生理鹽水)

3.0.1mg/mL考馬斯亮蘭G-250溶液 蛋白定量用。用50ml 95%乙醇溶解100mg考馬斯亮蘭G-250,再加入100ml 85%磷酸,加水至1000ml。用Whatman濾紙過(guò)濾后,置棕色瓶4度保存。蛋白定量比色皿可用95%乙醇脫色。

4.考馬斯亮蘭脫色液 含50%甲醇、10%冰醋酸、40%去離子水。

5. 0.25%考馬斯亮蘭R-250溶液 染色用。100ml脫色液中加入0.25g考馬斯亮蘭R-250。

6.10mg/mlBSA,稱(chēng)取100mg小牛血清白蛋白溶于10ml滅菌去離子水中。置-20度冰箱保存。

7.1mol/L Tris-Hcl緩沖液,PH6.8

8.1.5 mol/L Tris-Hcl緩沖液,PH8.8

9.10% AP:過(guò)硫酸銨(Ammonium Persulfate,AP),Amresco分裝,為促凝劑,現配現用,準確稱(chēng)取AP 20mg于0.5ml離心管內(注:稱(chēng)量時(shí)可分裝數管室溫保存備用)臨用前加去離子水200ul溶解。配制好的AP溶液4C可保存1周。

10.TEMED,Amresco分裝,100ml包裝,為促凝劑,準確吸取TEMED 10ul于0.2ml離心管內,可分裝數管室溫保存備用。

11.10% SDS  在90ml去離子水中溶解10g電泳級SDS,加熱至68℃助溶,加入幾滴濃鹽酸調節溶液的pH值至7.2,加入去離子水定容至100ml,室溫保存。

12.30% Acr  將29g丙烯酰胺和1gN,N’-亞甲雙丙烯酰胺溶于總體積為60ml的水中,加熱至37℃溶解之,補加水至終體積為100ml。用Nalgene濾器(0.45孔徑)過(guò)濾除菌查證該溶液的pH值應不大于7.0,置棕色瓶中4度保存。

13.6xLoading buffer:6倍sample buffer

300mM tris.Hcl pH=6.8  , 12% SDS ,0.6% bromophenol blue (溴酚藍),60%Glycerol,甘油

Filted,分裝在1ml tube, 每毫升加43ul B-ME(β-巰基乙醇,還原劑),-20度保存。

14.蛋白Marker:  選擇最適分子量Marker(MBI公司蛋白Marker很好)

15.內參:可選擇最適分子量?jì)葏⒆?:3000-5000稀釋?zhuān)鏐-Actin(45KD,漿蛋白用)、GAPDH(36KD,漿蛋白用,上??党缮锝?jīng)銷(xiāo))、B-Tubulin(核蛋白用)等。

16.1xTris-Glycine電泳緩沖液(PH8.3)

25mM tris,192mM Glycine, 0.1%(w/v)SDS,

500ml配方如下

Tris1.515g, glycine7.2g, SDS0.5g用去離子水加至500ml。加10M HCl約800ul,就可以調至pH8.3。

17.1xTransfer buffer(PH8.3)

25mM tris, 192mM Glycine, 20%Methanol(甲醇),ph為8.3

 500ml配方如下

Tris 1.515g,glycine7.2g,100ml Methanol(甲醇),用去離子水加至500ml。加10M HCl約550ul,就可以調至pH8.3。

18. TBST Washing buffer:

50mM tris, 150mM Nacl, 0.1% Tween-20

1L配方如下

Tris 6.06g,NaCl8.7g,1mlTween-20,加入去離子水至1L,同時(shí)精確調準pH值為7.6。加10M HCl約4200ul,就可以調至7.6。Tween-20要在用前現加,未加Tween-20的稱(chēng)為T(mén)BS緩沖液。

19.5%的脫脂奶粉封閉液  用TBST Washing buffer配制。

20.一抗:santa原裝或北京中山分裝,一般做1:200-300稀釋。

21.HRP標記二抗:一般做1:3000-5000稀釋。二抗選擇原則如下:

  如一抗為鼠抗人IgG, 二抗選擇羊抗(或兔抗)鼠HRP;

如一抗為羊抗人IgG, 二抗選擇鼠抗(或兔抗)羊HRP;

如一抗為兔抗人IgG, 二抗選擇羊抗(或鼠抗)兔HRP。

22.ECL化學(xué)發(fā)光顯色劑,或DAB顯色劑

三.總蛋白質(zhì)提取

1.培養細胞

1.1貼壁細胞數目達到培養皿(或培養瓶)底面積80-90%,最好前一天換上新的培養液。

1.2將培養液吸凈,用5ml左右4度PBS洗三次細胞平皿(洗凈培養液中的胎牛血清等外源性蛋白),將PBS吸凈,加入triple-detergent lysis buffer,100mm培養皿加300ul。(蛋白質(zhì)種類(lèi)不同—漿蛋白、核蛋白、膜蛋白,細胞裂解液有所不同)如暫時(shí)不提取,可將培養皿-80度保存。

1.3輕輕的轉動(dòng)培養皿直到細胞被溶解下來(lái),細胞刮輕輕刮下裂解物,并可見(jiàn)白色的核酸(DNA、RNA)沉淀,(約1分鐘)將所有的液體包括沉淀,吸入1.5ml離心管,旋渦混勻器30秒,放在冰上10分鐘使細胞充分裂解,然后,用4度離心機12000轉10分鐘。

1.4留10ul上清液做蛋白定量外,其余上清于另一1.5ml離心管(將蛋白樣品5份+1份6×loading buffe,6×loading buffe加入前用80度左右的水預熱一下,使其溶解充分。把樣品在100度的沸水中煮5分鐘使蛋白變性,離心管上標明蛋白含量,保存在-80度冰箱)

2.組織中蛋白提取

2.1特小的組織加300ulLysis buffer玻璃勻漿器中,冰浴中研磨數次,勻漿上清液吸入1.5ml離心管中,然后,用4度離心機12000轉10分鐘。吸取上清于另一1.5ml離心管,分裝,保存在-80度冰箱。留10ul上清液做蛋白定量。

2.2取50-100mg組織放入玻璃勻漿器中,加3倍體積Lysis buffer,冰浴中研磨數次,勻漿上清液吸入1.5ml離心管中,然后,用4度離心機12000轉10分鐘。吸取上清于另一1.5ml離心管,分裝,保存在-80度冰箱。留10ul上清液做蛋白定量。

四.蛋白質(zhì)定量

1.應用標準的Bradford法定量。

2.待測樣本各10ul+90ul生理鹽水;標準管中分別加入10mg/mlBSA 0ul、2.5ul、5.0ul、7.5ul、10ul, 每管加生理鹽水至100ul(蛋白含量分別為0、25、50、75、100ug),同時(shí)以100ul的生理鹽水作空白對照。各管加入考馬斯亮藍染料溶液1900ul至總體積2ml,混勻,室溫放置2分鐘。比色檢測作標準曲線(xiàn),計算出各個(gè)樣品的蛋白含量。

3.比色定量:通過(guò)OD值,來(lái)計算蛋白量。統計軟件計算出結果;

五.樣品準備

1.將已定量的蛋白樣品5份+1份6×loading buffe,6×loading buffe加入前用80度左右的水預熱一下,使其溶解充分。把樣品在100度的沸水中煮5分鐘, (水中煮沸5分鐘,目的是讓蛋白變性,由四級結構變成一級結構。注意事項:煮沸時(shí),一定不要讓離心管口彈開(kāi)進(jìn)入水,要隨時(shí)觀(guān)察。)

2.一般來(lái)講蛋白上樣量30ug;計算出每個(gè)樣品30ug所用的體積,在樣品管上標記體積數值,以后直接吸取就行了。

3.等體積上樣:用事先準備好1×loading buffer,調成15ul相同體積。這樣條帶整齊。

六.蛋白電泳

1.分離膠制備

1.膠的選擇:膠的濃度越大,所能分離蛋白的分子量越小。(阿恒覺(jué)得這里一般還是10%到15%的比較常用)

7.5% :45—200KD

10%: 31----200KD

12%: 21.5---200KD

15%6.5---200KD

2.10ml 10%分離膠制備

   去離子水                  3950ul

   30%Acr                    3350ul

   1.5MTris-Hcl,PH8.8        2500ul

   10%SDS                     100ul

   混勻;依次快速加入10%AP 100ul及TEMED 4ul,充分混勻但不要產(chǎn)生氣泡。(這部很關(guān)鍵)

3.立即灌膠,不要產(chǎn)生氣泡,如有氣泡可用10ml注射器針頭排除。在每側膠板加膠至紅色塑料板的下緣處即可(差不多4-5ml)

4.沿玻璃板壁緩慢加去離子水1cm高度,隔絕空氣,分離膠室溫凝固2小時(shí)以上。也可4度冰箱過(guò)夜。

2.5%積層膠制備

(配制積層膠前先傾斜玻璃板,使上面水層匯聚于一邊,用10ml注射器吸取干凈,靜置10分鐘左右,使水分蒸發(fā)干凈)

2.1 4ml 5%積層膠制備

   去離子水                  2800ul

   30%Acr                     660ul

   1MTris-Hcl,PH6.8           500ul

   10%SDS                      40ul

混勻;依次快速加入10%AP 40ul及TEMED 4ul,充分混勻但不要產(chǎn)生氣泡。立即灌膠,不要產(chǎn)生氣泡,如有氣泡可用10ml注射器針頭排除。

2.2插上梳子,積層膠室溫凝固30分鐘以上。小心撥出梳子,若膠孔有歪斜,則用注射器加以修正,吸出氣泡;(歪斜一般出現在基層膠凝固時(shí)間過(guò)短,或者配置比重過(guò)低,可用針頭撥亂反正之,但是難度很高,容易挑破)

2.3去掉膠條,加入甘氨酸電泳緩沖液,內外持平;

2.4清洗膠孔:去除沒(méi)有凝聚的Acr,并清除氣泡。

3.點(diǎn)樣:使用20ul的加樣槍?zhuān)捎?#8220;對側加樣法”加樣。

4.電泳

電泳在4度冰箱中進(jìn)行,積層膠90V,30分鐘左右,待溴酚蘭指示劑到達分離膠表面時(shí)改變電壓120-130V,2小時(shí)左右――此方法可以保持膠內受熱均勻,電流、電場(chǎng)均勻,條帶齊規整)

5.剝離膠:在平皿中,用手術(shù)刀片小心剝離,切掉積層膠,取出分離膠,用于下一步試驗。

七.轉膜

1.準備一大的玻璃培養皿,

2.Tansfer buffer:配制500ml(一部分倒于玻璃皿中,以分離膠-制作夾心餅);取膠-修剪膠:取膠時(shí)手應錯開(kāi)分離玻璃,使膠取出,去掉積層膠部分,修剪周邊使其與預先制作好的硝酸膜大小一致,約長(cháng)8cm、高5cm左右,NC膜用剪刀在一個(gè)角剪一個(gè)標記;制作夾心餅:黑負白正,從近負極面依次為“黑夾板=海棉-濾紙(5層)-膠-膜-濾紙(5層)-海棉=白夾板”形象“漢堡”或“夾心餅”;用玻璃棒趕盡氣泡](這步要一層層的趕氣泡,氣泡非常影響轉膜結果)

3. Transfer time

4度6-12小時(shí)(4C轉膜過(guò)夜,時(shí)間根據分子量的大小調整,大分子可以12小時(shí),小的6小時(shí)左右)

4.將膜取下,用去離子水洗。

八.Western blot

blot之前可以用麗春紅(ponceaus)染NC膜,以觀(guān)察蛋白轉膜情況(是否完全、條帶是否齊)。然后用自來(lái)水或washing buffer洗掉麗春紅后進(jìn)行印跡??梢耘軆蓧K膠,一塊blot,一塊染色觀(guān)察。(其實(shí),恩,染過(guò)色的膠洗掉還是可以用的,吼吼?。?

步驟:

1.裁膜:根據電泳后蛋白Marker的位置,裁剪所需目的蛋白、內參對應的膜。

2.封閉抗體:將膜放入自制blot袋;封閉液用5%的美國脫脂奶粉(用TBST wash buffer配制),blot with milk for 1h RT,也可4度過(guò)夜。(這個(gè)做袋袋,也是很有意思地 = = 哈哈?。?

3.加一抗:blot in primary antibody for 1.5h RT(抗體用milk稀釋?zhuān)?

4.洗膜:wash with TBST wash buffer 5times, each time 3mins

5.加二抗:blot in secondary antibody 1h RT (抗體用milk稀釋?zhuān)?

6.洗膜:wash with TBST wash buffer 5times, each time 3mins

九ECL顯色

1.加ECL試劑10ml于100mm玻璃培養皿中,再加30%雙氧水6ul(帶上手套,防止腐蝕皮膚)(萬(wàn)一腐蝕了,皮膚變成白色的,又疼又養,這是一個(gè)比偶倒霉的哥哥告訴偶的),搖勻。

2.用濾紙吸干NC膜上水分,將膜放入ECL顯色液中顯色,肉眼看到條帶后,就可以取出,顯色強的約幾秒鐘,顯色弱的時(shí)間長(cháng)些,但是不可以超過(guò)3分鐘。

十.放射自顯影,沖洗膠片

1.放射自顯影操作在暗室進(jìn)行。紅色燈光下可避免底片曝光。切忌底片濕水。

2.用濾紙吸干膜上ECL顯色液,先將膜放入暗盒內,再放X膠片,根據目的條帶ECL顯色的強弱決定曝光時(shí)間。 (伸手不見(jiàn)5指的曝光,經(jīng)常大眼瞪小眼的看條帶)

3.目的條帶ECL顯色肉眼可以看到的話(huà),說(shuō)明比較強,曝光時(shí)間可以短些,“3分鐘、5分鐘各一張+必不可以少的10分鐘一張”;肉眼看不見(jiàn),曝光時(shí)間可以長(cháng)些,“不可以少的10分鐘,15分鐘、30分鐘各一張”。

4.一般來(lái)說(shuō),曝光三張已足夠用。(偶一口氣爆上6張,左眼看3張,右眼看3張,嘿嘿~~)

5.放射科沖洗X膠片,讀片。

6.X膠片掃描保存。

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